2017, Número 4
<< Anterior Siguiente >>
Rev Mex Ortodon 2017; 5 (4)
Inmunoexpresión del factor de crecimiento transformante β3 (TGF-β3) y del receptor III del factor de crecimiento transformante β (TGF β-RIII) en pacientes pediátricos con paladar hendido completo o incompleto no sindromático
López GC, Maldonado MHA, García LS, Rosas RMC, López CF, Pérez GA, Gutiérrez VDH
Idioma: Español
Referencias bibliográficas: 40
Paginas: 214-220
Archivo PDF: 289.93 Kb.
RESUMEN
Introducción: El factor de crecimiento transformante β3 (TGF-β3) y el receptor III del factor de crecimiento transformante β (TGFβ-RIII), regulan las interacciones epitelio-mesenquimales. La falta de expresión de TGF-β3 y del TGF-βRIII provoca defectos en la fusión palatina.
Objetivo: Observar la inmunoexpresión del TGF-β3 y del TGF-βRIII en pacientes pediátricos con paladar hendido (PH), completo o incompleto no sindrómico.
Material y métodos: El diseño de estudio fue observacional, descriptivo, prospectivo y transversal. La muestra consistió de 20 pacientes con PH completo e incompleto, de cinco a 28 meses de edad. Se tomaron muestras del mucoperiostio de la hendidura palatina durante la palatoplastia. Para realizar la inmunohistoquímica, las muestras se procesaron en un aparato VENTANA BenchMark Ultra, con el anticuerpo TGF-β3 y TGFβ-RIII. Se valoró su expresión, mediante impresión global celular.
Resultados: La inmunoexpresión del TGF-β3 fue mayor en las células epiteliales que en los fibroblastos de pacientes con PH completo e incompleto; sin embargo, la inmunoexpresión del TGFβ-RIII fue mayor en los fibroblastos que en células epiteliales de pacientes con paladar hendido completo.
Conclusiones: Se concluyó que la falta de expresión del TGFβ-RIII en epitelio, podría tener relación con la falta de fusión de las crestas palatinas. Sería de gran interés realizar un análisis más profundo de la expresión de TGF-β3 y TGFβ-RIII, en distintas poblaciones celulares.
REFERENCIAS (EN ESTE ARTÍCULO)
Dixon MJ, Ferguson MW. The effects of epidermal growth factor, transforming growth factors alpha and beta and platelet-derived growth factor on murine palatal shelves in organ culture. Arch Oral Biol. 1992; 37 (5): 395-410.
Gehris AL, Greene RM. Regulation of murine embryonic epithelial cell differentiation by transforming growth factors beta. Differentiation. 1992; 49 (3): 167-173.
Brunet CL, Sharpe PM, Ferguson MW. Inhibition of TGF-β3 (but not TGF-β1 or TGF-β2) activity prevents normal mouse embryonic palate fusion. Int J Dev Biol. 1995; 39 (2): 345-355.
Gálvez-Gastélum FJ, Sandoval-Rodríguez AS, Armendáriz-Borunda J. El factor de crecimiento transformante beta como blanco terapéutico. Salud Pública Méx. 2004; 46 (4): 341-350.
Nonaka K. Our challenging to understand non-genetic effect in addition to genetic one on dento-craniofacial morphogenesis in spontaneous cleft lip/palate mouse model from the standing point of pediatric dentistry. Jpn Dent Sci Rev. 2009; 45 (1): 127-130.
Parada CE, Bayona F. Palatogénesis y hendiduras palatinas: implicación de TGFβ3 y BMPs. Acta Biol Colomb. 2004; 9 (2): 13-23.
Thesleff I. The genetic basis of normal and abnormal craniofacial development. Acta Odontol Scand. 1998; 56 (6): 321-325.
Jernvall J, Thesleff I. Reiterative signaling and patterning during mammalian tooth morphogenesis. Mech Dev. 2000; 92 (1): 19-29.
Fitzpatrick DR, Denhez F, Kondaiah P, Akhurst RJ. Differential expression of TGF beta isoforms in murine palatogenesis. Development. 1990; 109 (3): 585-595.
Iwata J, Hacia JG, Suzuki A, Sanchez-Lara PA, Urata M, Chai Y. Modulation of noncanonical TGF-β signaling prevents cleft palate in Tgfbr2 mutant mice. J Clin Invest. 2012; 122 (3): 873-885.
López F, Vilchis M, Esparza J, Ponce M, Velasco N, Juárez P et al. Regulation of the TGF-β superfamily by betaglycan. Transforming growth factor-β in cancer therapy. NJ, EUA: Humana Press, Inc., Totowa; 2008.
Border W, Noble N. TGF-β. Sci Am Sci Med. 1995; 2: 68-77.
Bissell DM, Roulot D, George J. Transforming growth factor beta and the liver. Hepatology. 2001; 34 (5): 859-867.
de Caestecker M. The transforming growth factor-beta superfamily of receptors. Cytokine Growth Factor Rev. 2004; 15 (1): 1-11.
Nakajima A, Ito Y, Asano M, Maeno M, Iwata K, Mitsui N et al. Functional role of transforming growth factor-beta type III receptor during palatal fusion. Dev Dyn. 2007; 236 (3): 791-801.
Hill CR, Jacobs BH, Brown CB, Barnett JV, Goudy SL. Type III transforming growth factor beta receptor regulates vascular and osteoblast development during palatogenesis. Dev Dyn. 2015; 244 (2): 122-133.
Cui XM, Warburton D, Zhao J, Crowe DL, Shuler CF. Immunohistochemical localization of TGF-beta type II receptor and TGF-beta 3 during palatogenesis in vivo and in vitro. Int J Dev Biol. 1998; 42 (6): 817-820.
Brown CB, Boyer AS, Runyan RB, Barnett JV. Requirement of type III TGF-beta receptor for endocardial cell transformation in the heart. Science. 1999; 283 (5410): 2080-2082.
López-Casillas F, Wrana JL, Massagué J. Betaglycan presents ligand to the TGF beta signaling receptor. Cell. 1993; 73 (7): 1435-1444.
López-Casillas F, Cheifetz S, Doody J, Andres JL, Lane WS, Massagué J. Structure and expression of the membrane proteoglycan betaglycan, a component of the TGF-beta receptor system. Cell. 1991; 67 (4): 785-795.
Wang XF, Lin HY, Ng-Eaton E, Downward J, Lodish HF, Weinberg RA. Expression cloning and characterization of the TGF-beta type III receptor. Cell. 1991; 67 (4): 797-805.
Cui XM, Shuler CF. The TGF-β type III receptor is localized to the medial edge epithelium during palatal fusion. Int J Dev Biol. 2000; 44 (4): 397-402.
Alappat SR, Zhang Z, Suzuki K, Zhang X, Liu H, Jiang R et al. The cellular and molecular etiology of the cleft secondary palate in Fgf10 mutant mice. Dev Biol. 2005; 277 (1): 102-113.
Dudas M, Kim J, Li WY, Nagy A, Larsson J, Karlsson S et al. Epithelial and ectomesenchymal role of the type I TGF-β receptor ALK5 during facial morphogenesis and palatal fusion. Dev Biol. 2006; 296 (2): 298-314.
Taya Y, O’Kane S, Ferguson MW. Pathogenesis of cleft palate in TGF-beta3 knockout mice. Development. 1999; 126 (17): 3869-3879.
Nawshad A, LaGamba D, Hay ED. Transforming growth factor β (TGFβ) signalling in palatal growth, apoptosis and epithelial mesenchymal transformation (EMT). Arch Oral Biol. 2004; 49 (9): 675-689.
Cui XM, Shiomi N, Chen J, Saito T, Yamamoto T, Ito Y et al. Overexpression of Smad2 in Tgf-beta3-null mutant mice rescues cleft palate. Dev Biol. 2005; 278 (1): 193-202.
Martínez-Alvarez C, Tudela C, Pérez-Miguelsanz J, O’Kane S, Puerta J, Ferguson MW. Medial edge epithelial cell fate during palatal fusion. Dev Biol. 2000; 220 (2): 343-357.
Gordon KJ, Blobe GC. Role of transforming growth factor-beta superfamily signaling pathways in human disease. Biochim Biophys Acta. 2008; 1782 (4): 197-228.
Cui XM, Chai Y, Chen J, Yamamoto T, Ito Y, Bringas P et al. TGF-beta3-dependent SMAD2 phosphorylation and inhibition of MEE proliferation during palatal fusion. Dev Dyn. 2003; 227 (3): 387-394.
Gato A, Martinez ML, Tudela C, Alonso I, Moro JA, Formoso MA et al. TGF-β(3)-induced chondroitin sulphate proteoglycan mediates palatal shelf adhesion. Dev Biol. 2002; 250 (2): 393-405.
Cui XM, Shuler CF. The TGF-beta type III receptor is localized to the medial edge epithelium during palatal fusion. Int J Dev Biol. 2000; 44 (4): 397-402.
Goudy S, Law A, Sanchez G, Baldwin HS, Brown C. Tbx1 is necessary for palatal elongation and elevation. Mech Dev. 2010; 127 (5-6): 292-300.
Kernahan y Stark. Aspectos generales. Clasificación de labio y paladar hendido. En: Rozen I. Texto de labio y paladar hendido. Conceptos básicos. México: Compu edición y Cuidado; 2000. Capítulo 1, pp. 17-35.
Uhlén M, Fagerberg L, Hallström BM, Lindskog C, Oksvold P, Mardinoglu A et al. Proteomics. Tissue-based map of the human proteome. Science. 2015; 347 (6220): 1260419.
Levi B, Brugman S, Wong VW, Grova M, Longaker MT, Wan DC. Palatogenesis: engineering, pathways and pathologies. Organogenesis. 2011; 7 (4): 242-254.
Funato N, Nakamura M, Yanagisawa H. Molecular basis of cleft palates in mice. World J Biol Chem. 2015; 6 (3): 121-138.
López-Sánchez R, Berenguer-Fröhner B, González-Meli B, Rodríguez-Urcelay P, Marín-Molina C, de Tomás-Palacios E et al. Colgajo FAMM para reconstrucción de fístulas de paladar en pacientes con fisura palatina congénita: experiencia y resultados. Cir Plást Iberolatinoam. 2014; 40 (3): 261-270.
Jiménez K, González J, Sahagún J. Cierre de fístula palatina recurrente con el uso de plasma rico en factores de crecimiento. Rev Esp Méd Quir. 2011; 16 (2): 119-123.
Jiménez K, González J. Uso de plasma rico en factores de crecimiento para disminuir la recurrencia de fístulas nasopalatinas en pacientes con antecedente de paladar hendido. An Orl Mex. 2011; 56 (2): 63-75.